原子力显微镜及其在细胞生物学中的应用

用原子力显微镜对细胞进行成像
1．细胞及细胞器的成像  各种固定并干燥的细胞可用AFM来成像。1990年Gould等用原子力显微镜首次观察了在盖玻片上干燥的细胞（Gould等，1990）。他们用原子力显微镜完成了淋巴细胞（一种类型的白血细胞）的检测，并且曾经分辨出细胞中10nm大小的表面结构特征，其样品是通过将抗免疫球蛋白抗体沉积到玻璃基底上得到的。

继Gould等人用原子力显微镜观察了第l个细胞之后，用原子力显微镜对其他多种类型的细胞的研究也已报道（Butt等，1991；Haberle等，1991）。白血细胞、神经细胞及心肌细胞用原子力显微镜已取得较好的图象。细胞内的结构也可以识别（图2：A、B、C）。

Butt等用原子力显微镜对白血细胞进行了成像，在水溶液中的图象可分辨到12nm和特征，而经固定后的红血及白血细胞在缓冲液中成像可以分辨到8nm的结构特征。其图象表明原子力显微镜可以提供在生理条件下细胞表面的高分辨结果。图3是他们得到的白血细胞的图象。

Haberle等人报道了单个活细胞的原子力显微镜研究（Haberle等，1991）。实验过程是在适当的生理条件下，维持细胞具有活性的情况下进行的。他们首次使对红血细胞的观察在该条件下达到10nm的分辨率，这种图象中观察到的结构基本与从干燥细胞观察到的结果相同。

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图3  固定化的白血细胞的AFM图象
Fig.3  AFM image of fixed leucocyte

2．染色体的原子力显微图象  新近Putman等人用原子力显微镜获得了整个染色体的图象（图2 D）（Putman等，1992），从图2：D可明显看到，染色体呈X型的“四臂结构”，染色体中的一些亚结构在一定程度上可以被识别.

3．细胞中分子和细胞膜的成像  细胞中的一些蛋白质分子曾经用AFM成像过。其中包括免疫球蛋白（immunoglobulins），血纤维蛋白（fibrin），磷酸化酶（phosphorylase）及肌动纤维（actin）（Drake等，1989；Edstrom等，1990；Weisenhorn等，1990），用AFM可以分辨出一些亚细胞结构。尽管成像作用力、蛋白质运动及脱水作用很可能是影响分辨率的重要因素，但目前蛋白质成像分辨较低的原因仍然很难被完全理解。蛋白质镶嵌在细胞膜上（如离子通道和受体）可能带来一些好处，在这种条件下，蛋白质可以通过膜来支撑。紫膜（purple membranes）上的细菌视紫红质已获得高分辨的图象（Butt等，1990）。Devaud 等在细菌S-层上已检测到蛋白质排列（array）中的缺陷，1991年Hoh等人曾经得到过能彼此分开的一种称为“Gap junction”（缝隙连结）的图象（图4：A、B）（Hoh等，1991）。图象很明显类似于负染色的电镜结果，他们的结果与过去对这种结构的观察结果相比有明显的改善。

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图4  分子和膜的AFM图象
Fig.4  AFM image of molecule and membrane

A：磷酸缓冲液中“gap junction”膜通道细胞外表面的AFM象（80nm×80nm）；

B：“gap junction”边缘的表面图象，在通道排列中从右边的磷脂双层到左边的凸起为1—2nm（图中尺寸以nm为单位）.

在其他生物分子中，最引人注意的是脂质和核酸。脂质和脂肪酸已在各种人工L-B膜中成像过。单个分子的头部基团（head group）和尾部基团（tail group）已可以分辨。高度结晶化的膜的疏水末端可以在空气中成像（Meyer等，1991），而极性头部基团则要求水环境（Zasadzinski等，1991；Egger 等，1990）。目前，天然膜中单个脂质分子尚未观察到。成像流动体膜中的细节结构是一个重要的问题。

若干年来，有几个研究小组一直致力于用扫描隧道显微镜及原子力显微镜来研究DNA结构的工作，或许能够用来进行DNA的测序。新近，可靠地沉积和成像质粒DNA的方法已取得进展（Bustamnante等，1992，Hansma等，1992），但主要限于在离体的胞外进行的研究。

细胞水平上的动态现象观察
1．病毒穿过细胞膜的动态过程的观察  1992年Haberle等成功地用AFM直接观察到活细胞中发生的生物学过程（Haberle等，1992）。实验是在生理条件下进行的，该实验实现了用AFM在其它技术所不能达到的尺度上进行原位观察。猴肾活细胞在生长条件下进行成像，并可观察到10nm的可重复结构特征。当加入1个牛痘（pox）病毒时，在不同细胞的不同实验中可重复地观察到细胞膜的特征变化。在加入病毒之后，细胞表面立即变软。2h后明显的在细胞膜外长出，然后这种突起又突然消失。图5是他们拍摄到的最为特征的病毒穿过细胞膜的动态过程，这种现象仅在细胞被感染后才观察到。他们将其解释为与病毒繁殖有关的蛋白胞泄过程。

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2．细胞生长过程中胞内结构变化观察  新近Henderson等用原子力显微镜成功地观察到活细胞中的纤维状肌动蛋白的形态（Henderson等，1992）。图6是他们所得到的XRL细胞中的细节结构，这是其中的肌动蛋白的原子力显微图象。更有意思的是，他们成功地观察到其中XRL细胞在40min生长过程中的边界及内部F-肌动蛋白的许多形态变化，这些变化如图6所示。斑点可作为静止位置的标记，如在8min时及16min时框图中的箭头所示，在8min的时间间隔内，两根纤维之间的空间增加3μm，根据细胞边缘下面的白色斑点位置，细胞的真正运动可相对地据此来进行确定。

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图6  XRL细胞中F-肌动蛋白的AFM图象（标尺=50nm）
Fig.6  AFM image of F-actin in XRL cells（bar=50nm）

现状及展望

原子力显微镜已经在研究细胞、亚细胞水平的结构取得了成功。它可以在大气下对细胞进行成像，并且不用重金属进行覆盖，因此与常规的透射电镜和扫描电镜相比有其优点。但是目前用原子力显微镜来成像细胞结构还没有达到足够高的分辨率。其主要原因可能与生物材料的柔性有关。将样品固定到原子力显微镜可以进行测量的表面上，这仍然是一个值得研究的问题，解决这个问题的一般方法尚待发展。如果要在成像细胞结构或生物分子时仍然保持其功能，则需要在非变性条件下作刚性固定（rigid archoring）。尽管原子力显微镜在研究生物材料方面目前尚未达到尽善尽美的地步，但其潜在的能力具有相当诱人的前景。

原子力显微镜的最突出的功能就是能够实时地跟踪过程，目前原子力显微镜的成像通常需要10—100s，它可以用来观察RNA的翻译或细胞的分裂之类的快速过程。这种能力的有力证明就是对与凝血酶有关的血纤维质的聚合过程的观察（Drake等，1989）。

利用原子力显微镜来进行成像固然是其最重要的用途，可是其他方面的应用也十分重要，尤其是微加工。已经有几个研究组报道，用原子力显微镜可以使蛋白质在云母表面上移动，在人工脂膜上可以制作纳米尺寸的洞穴（Hansma等，1991）。对于由两个并生双层（apposed  bilayers）组成的隔开的联结空隙处，用原子力显微镜针尖可以将其中的1个双层切去（Hoh 等，1991）。最近，利用AFM，质粒DNA已被剪切成特殊的尺寸而与其序列无关。也许这会产生一些分子克隆或DNA测序的新方法。如果将活性分子如蛋白酶或抗体连接到针尖上，将会使原子力显微镜发展成为超越单纯机械加工的工具，从而用在局域化学或生物化学中（local chemistry and biochemistry）。

当原子力显微镜用1个尖锐的针尖与表面接触时，它使我们不仅可以测定表面的拓扑结构，而且会指出这种作用力特性的问题，关于界面间分子作用力的理解，Israelachvili及其同事已有报道。它使用的是表面测力仪（surface force apparatns）。表面测力仪通过将两个表面靠近并测定相互作用与间距之间的关系，它已被用来检测水合作用及受体（Israelachvili等，1983）-配体间的结合（Leckband等，1992）。原子力显微镜有可能提供类似于表面测力仪的测定技术，但原子力显微镜不仅可以在很小的接触面积上做许多相似的测量，并且带有相当高的空间分辨率（Landman等，1990）。这将会取得细胞膜及分子的许多物理及化学性质的高分辨图谱。

原子力显微镜已经以惊人的速度取得进展，其发明后才6年的时间，就已经在技术科学与材料科学研究中成为人们公认的重要工具。这几年由于物理学家与工程师对仪器研制的贡献，使其从实验室的胚胎中发展成为成像刚性样品的可靠工具。以后几年对于生物学家及生物化学家来说，更好地成像软样品是需要努力的重要任务。

参考文献
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Atomic Force Microscope (AFM) and Aplications in Cell Biology
Zhang Pingcheng  Cheng Yingjun  Fang Ye  Wang Zhonghuai  Bai Chunli
(Institute of Chemistry, Academia Sinica, Beijing  100080)
The basic principle of AFM is described here briefly. Applications of AFM in imaging cell, cellular organels, chromosome, cell membrance are reviewed. Two interesting examples about dynamic process taken place in cell are given.
Key words: AFM, Cell, Structure, Imaging, Dynamics

作者简介
白春礼，39岁。研究员，中国科学院化学研究所副所长，基础研究部主任，国家级有突出贡献的中、青年专家，全国先进工作者。

主要著作有《扫描隧道显微术及其应用》等。先后在国内外学术刊物上发表论文50余篇。研制成功计算机控制的扫描隧道显微镜（STM），获1990年国家科技进步二等奖；继又研制成功我国第一台原子力场显微镜（AFM），获中国科学院1991年科技进步一等奖。“七·五”期间承担中国科学院“重中之重”项目，中国科学院院长基金特别支持项目。“八·五”期间又承担中国科学院“八·五”重大项目——表面、界面和大分子结构的扫描隧道显微学研究。